ಠ_ಠ
need help https://images.plurk.com/2OJKD3GMuBcgVjHZ9mLBkg.jpg
why我的DNA電泳上半部這麼亮
egg346
鹽離子濃度過高或者分佈不均?
egg346
還有一個說超負荷熟了
這個我沒經驗
ಠ_ಠ
egg346: 鹽離子濃度過高,所以可能是TAE buffer的問題嗎?
那我之後試用比較低伏特跑看看,感謝蛋大!
mink2948
你是跑前染還是跑後染?還有是用什麼染劑?
egg346
還有一個說你緩衝液放太久了
可能隔夜了 靠北一堆鬼跑來幹保全
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mink2948: 跑前染,用的是這個Safeview classic
egg346
就我最爛我都看不懂
mink2948
不覺得是egg說的那些原因
含etbr的染劑不建議跑前染因為它帶正電
可以參考下面的討論
https://www.researchgate.net/...
egg346
看來幹保全不是沒原因的
噗主快點實驗我要去笑他們
mink2948
50x緩衝液其實可以放很久,只要是用之前稀釋就行
濃度過高或分布不均的話你的band會長得更醜
然後你電壓調低沒幫助,只是會讓解析度變差
mink2948
另外我會覺得你染劑放太多了
背景很雜
如果你是照protocol作
可以再調更稀一點
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egg346: 這個緩衝液是真的重複用很多次ㄌ
mink2948: Safeview應該不是etbr,雖然我也不知道他到底是什麼 我找找實驗室有沒有跑後染的染劑
另外這個TAE不只是放很久,是我們每次實驗後會回收使用(電泳槽裡的,製膠用的是新的TAE),這部分會不會影響?
mink2948
通常染劑都是帶正電(因為dna帶負電,這樣才能卡進去)所以我通常都是跑後染
tae要回收重複用ok,但是要槽裡和製膠用同一個來源比較好(都用回收的或都用新的)
mink2948
但其實我以前buffer都不會重複用的啦
省buffer的小錢,搞不好會造成後續debug花更多時間和錢,不划算
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mink2948: 我之後配新的TAE再跑一次試試,也挖挖看跑後染的染劑
真D感謝兩位
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